加入生根粉和多菌灵的营养土 (果树移栽加微生物菌肥有用吗)

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文|古今闲客

编辑|古今闲客

扦插月季添加微生物菌剂有好处吗,加入生根粉和多菌灵的土能种菜吗

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摘要

世界上大部分土地被认为是干旱或半干旱的。这些土地特别容易受到预测的气候变化对水资源的影响,这些影响来自土壤肥力下降、降水和温度升高。气候变化是限制这些地区农业生产的主要威胁之一。另一方面,人口的不断扩张和经济的发展很可能导致对粮食资源的需求增加,从而增加对水资源的需求。因此,在农业中,鼓励种植耐旱、用水需求低、营养价值高、具有社会、经济和环境效益的物种是很重要的。

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介绍仙人掌

仙人掌密尔 是仙人掌科的一种药材,原产于墨西哥,广泛分布于中南美洲、非洲和地中海地区的干旱和半干旱地区。榕树在干旱和半干旱地区的农业系统中发挥着重要作用,因为它能很好地适应贫瘠的土壤和低水分条件。此外,仙人掌也在农业经济中发挥着重要作用。它们已用于人类和牲畜食品目的以及化妆品和化学工业。

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大量研究表明,仙人掌垫具有抗氧化特性,因为它们富含多酚、类黄酮、甜菜花青素和甜菜黄素。因此,它们对于预防人类退行性疾病,如癌症、糖尿病、高胆固醇血症、动脉硬化或心血管和胃部疾病,具有重要意义。

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仙人掌所面临的困境

然而,仙人掌土壤受到干旱、盐度和有机质损失等多种非生物胁迫,导致仙人掌生态系统恶化并限制其生产力。除了这些非生物限制外,仙人掌的种植还受到了害虫的攻击,这对世界各地和地中海地区的仙人掌种植造成了严重损害,特别是在摩洛哥,一些昆虫对仙人掌作物造成了相当大的社会经济和环境损失。鉴于这些限制, 生物刺激剂 的应用是非常有前途的,以支持新的仙人掌种植园。

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改进方法

几项研究表明,许多植物的生长、酚含量和抗氧化活性受到微生物或有机肥料(如丛枝菌根真菌和堆肥)使用的影响。AMF是最有前途的农艺因子之一,对植物生长和抗氧化化合物有积极影响。

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AMF共生存在于超过71%的维管植物中。这些真菌可以增强植物对水分和养分的吸收(特别是磷),并提高植物对生物和非生物胁迫的耐受性。此外,AMF还可能调节次生代谢物的合成,导致宿主植物总酚含量和抗氧化化合物的增加。另一方面,蚯蚓堆肥是微生物和蚯蚓在中温好氧条件下相互作用的二次产物,产生完全稳定的有机土壤改进剂,不含任何病原体材料和方法,真菌材料和蚯蚓堆肥从根周围土壤中分离到本地菌根联合体。

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位于摩洛哥马拉喀什以北4公里处的苏伊拉区。根据雷德克尔等人对采集的 菌根真菌孢子 进行形态鉴定。使用40 - 100倍放大的蔡司公里斯科普40显微镜,通过直接双眼计数测定100 g土壤中的孢子数。然后用聚乙烯醇乳酸甘油(PVLG)将它们组装在玻璃显微镜载玻片上,在显微镜下进行检查(×100),并根据颜色、大小、附着菌丝和浓度进行分类,以确定它们的种类。

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实验方法

根据梅迪奇等人的描述,在马拉喀什大学,塞梅拉利亚科学学院的受控温室条件下,以玉米(Zea mays L.)为寄主植物,通过盆栽陷阱培养繁殖真菌。AMF接种量为每罐30 g。我们实验中使用的蚯蚓堆肥是由马粪和秸秆与蚯蚓混合而成的产物,密度约为每升50条蚯蚓(每千克10克蚯蚓)。将施用的蚯蚓堆肥连续三天在200°C下蒸压1小时。蚯蚓堆肥的理化性质为pH: 7.7,有机质:438.8 mg g−1,有效磷:0.29 mg g−1,总有机碳:280 mg g−1,总氮:6.2 mg g−1,电导率:4.89 mS cm−1。

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本实验选用的仙人掌枝为产自摩洛哥拉姆那地区(北纬31°48'22.4 " N 7°58'36.6 " W)的1年生仙人掌枝(长34.11±0.8 cm,宽13.02±0.4 cm,厚7.5±0.7 mm)。树冠在阴凉处被切开并晒干两周,以便伤口愈合。然后,在每个装有2.5公斤无菌土壤的聚乙烯罐中种植一株枝蕨。土壤的理化特性如下:磷(P): 11 mg kg−1,氮(N): 1.1 mg g−1,有机质:10 mg g−1,总有机碳:59 mg kg−1,电导率:190µS cm−1,钠(Na+): 990 mg kg−1,钾(K +): 890 mg kg−1,钙(Ca2+): 11.48 mg kg−1,pH: 8.6。

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实验设计

本研究采用完全随机设计,采用2×2因子排列,每个处理6个重复,共24个罐。试验分为4个处理:1)不施用生物刺激剂的对照植株(控制), 2)接种AMF联合体(AMF), 3)单剂量5%蚯蚓堆肥, 4)蚯蚓堆肥和AMF联合体双重施用(Vc+AMF)。在试验期间,每星期用相同的水量给所有植株浇水两次。

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收获时,要小心地将植株挖开,以免对根系造成伤害。用水仔细清洗根系,除去附着的土壤,并将其与母枝孔(它们是从母枝孔发育而来的)分开。侧根系统的一部分根用KOH(10%)清洗,随后在乳酸中用台泼 蓝染色 。在40 - 100倍放大的蔡司公里斯科普40显微镜下检查染色的根段。根菌根侵染的频率和强度根据特鲁维洛等人的描述确定,计算公式为:AMF侵染频率(FA)(%) =(侵染根段/总根段)× 100 AMF侵染强度(Ma) (%) = (95n5 + 70n4 + 30n3 + 5n2 + n1)/总根段。

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在收获时,人工确定新发育枝的枝面积,用卷尺测量每个枝的长度和宽度。我们估计该枝的表面积为(宽度/2)(长度/2)×π,其中长度(L)是沿枝的最长轴从一端到另一端的距离,最大枝宽(W)是垂直于枝中部的最宽点。计算新垫的数量后,记录其新鲜和干重(在75°C干燥至恒重后)将新开发的枝状果收获,冷冻后用杵和臼在液氮中研磨成细粉。根据多布瓦等人描述的程序测量总可溶性糖含量。每个细粉末状样品的等分物(0.15 g)用4ml乙醇(80%)均质。收集上清液,与0.25 mL苯酚(5%)和1.25 mL浓硫酸混合。10 min后,用分光光度计(UV-3100 PC分光光度计)测定485 nm吸光度,测定TSS含量。

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为了测定总蛋白含量和抗氧化活性,将细粉(0.5 g)悬浮在含有0.1 M磷酸钾缓冲液(pH 7.0)、0.1 g聚乙烯醇吡啶酮和0.1 mM乙二胺四乙酸(EDTA)的5 mL溶液中,温度4℃。提取液18000 xg, 4℃离心10 min,上清液- 20℃保存。

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采用布拉德福德的方法,以牛血清白蛋白(BSA)作为标准蛋白,估计蛋白浓度。用分光光度计在595 nm处测定吸光度。

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超氧化物歧化酶活性测定采用拜尔和福利多为奇的方法。简单地说,在100 μL提取物中加入50 mM磷酸盐缓冲液(pH 7.8)、63 mM NBT、13 mM蛋氨酸和60 μM核黄素溶液,反应3 mL。将试管暴露在光下15分钟,在560nm处分光光度法测定提取液的吸光度。酶活性以min−1 mg−1蛋白为单位表示。

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过氧化氢酶活性采用艾比的方法,在240 nm处分光光度法测定过氧化氢(H2O2)浓度的降低,持续60s。根据方案,反应混合物为0.1 M磷酸钾缓冲液(pH 7.0), 0.1 mM EDTA, 20 mM H2O2和100 μL提取物,体积为100 μL。

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根据霍里等人的方法测定 多酚氧化酶活性 。反应混合物中加入20 mM儿茶酚,pH为6.0的0.1 M磷酸盐缓冲液,蒸馏水250 μL,提取物100 μL。用分光光度计在420 nm处记录吸光度。PPO活性以酶单位mg−1蛋白表达。植物提取物的制备新鲜发育的枝状茎用蒸馏水洗涤,80%乙醇消毒。

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样品被切割以方便干燥,并在55°C的对流烘箱中脱水72 h。脱水后的枝状体在搅拌机中研磨,得到的粉末经过过滤(860 μm),然后在4°C的密闭容器中保存,直到需要时使用。

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根据桑托斯艾雅等人描述的方法制备植物提取物,并进行了轻微修改。简单地说,将5 g干燥的植物粉末浸入50 mL(80%)的甲醇中,用电动振动筛振荡48小时。所得混合物用巴克纳漏斗和霍特曼1号滤纸过滤。然后,得到的滤液在40°C和60 rpm下旋转蒸发以去除溶剂。

各提取物的得率(%,w/w)采用Koubaa等(2015)的方法测定,计算公式为: 得率(%)=W1/W2×100其中W1=溶剂挥发后提取物的质量,W2 = 植物粉的质量。

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样品提取物用50 mL甲醇(80%)重新溶解,用巴克纳漏斗和霍特曼1号滤纸过滤,4°C冰箱保存,待进一步测定总酚含量(TPC)、总黄酮含量(TFC)和抗氧化活性。

根据森格利特和罗西的方法,以没食子酸(GA)为标准酚类化合物,采用Folin-Ciocalteu的方法测定仙人掌枝的TPC,记录725 nm处的吸光度。提取液(50µL)与2 mL蒸馏水和250µL未稀释的福林乔卡尔特乌试剂混合,加入500µL碳酸钠(20% Na2CO3)。将混合物置于室温黑暗中静置2小时。结果以每g干重mg GA当量表示。

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根据托希迪等人描述的氯化铝比色法评估TFC。该方法将提取液50µL与5% NaNO2溶液30µL混合,稳定6 min,然后加入10%氯化铝 60µL,孵育5 min。加入NaOH (1M) 300µL,蒸馏水使最终体积达到1000µL。孵育15 min后,在510 nm处测定该溶液的吸光度。TFC值以每g干重mg槲皮素当量(mg QE g−1 DW)表示。

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枝类提取物清除DPPH自由基的能力根据阿鲁瓦等人的方法进行评估。简单地说,取50 μL的提取物,用甲醇(0.01-1 mg/mL)连续稀释,加入到2 mL 60µM的DPPH甲醇溶液中。然后,在室温(25°C)下黑暗孵育30分钟,在517 nm处读取吸光度。用等量的甲醇和DPPH溶液制备的空白样品的吸光度作为阴性对照。

DPPH清除活性计算公式为:I% = [(A0-A1)/A0] ×100其中A0=阴性对照吸光度,A1=提取液吸光度。然后计算抑制50%自由基的分数浓度(IC50)。

参考文献

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[2] 药用的仙人掌科植物(上). 王意成;王翔.花木盆景(花卉园艺),2020

[3] 仙人掌多酚超声辅助醇提工艺优化及抗氧化、降脂能力分析. 王婧;郭阳;包怡红;田雪;李欢;邱隽蒙.食品与机械,2019

[4] 仙人掌提取物的分离及其抑菌性能的研究. 史德芳.广西大学,2006

[5] 丛枝菌根真菌(AMF)接种剂种类和接种时期对牡丹菌根化组培苗培养的影响. 曾端香;袁涛;王莲英.中国农学通报,2021

[6] 丛枝菌根真菌对干旱胁迫下梨树幼苗生长以及抗旱性的影响. 李娇娇.西南大学,2021

[7] 丛枝菌根真菌对甘薯生物量、根系形态及钾素吸收的影响. 周晓月;袁洁;石琨;汪吉东;朱国鹏;周其良;丁爱芳.江苏农业学报,2022

[8] 北方黑土地花生根际丛枝菌根菌(AMF)分离鉴定及应用. 王雪霏;曹哲;杨钥;周馨瞳;王子郡;邵文杰;周子恺;徐佳璐;孟令波;郑苗苗.高师理科学刊,2022