最全的微生物多样性样品采集方法总结
样品 第一站
样本准备前注意事项
标本采集是否符合要求，直接影响检验质量。因此要求做到及时性、合理性、有效性、代表性，以下注意事项为取样前读原则：
A. 采集的标本应盛于无菌容器内，确保所采集的标本无外源性的污染；
B. 根据目的菌的种类（需氧菌、厌氧菌等）采用不同的方法采集标本；
C. 所采集的标本必须有代表性；
D. 采集量不得过少，否则提取的DNA量过少不能满足后续实验；
E. 对样本的来源、采集过程和方法等作详细记录。
样品 第二站
土壤、泥沙、岩石样本
A. 选取采样地点，除去土壤表层未分解的凋落物层，先多点 采集土壤表面腐殖质层，然后用土壤取样器随机多点分别采集 0~10cm 及 10~25cm土层土壤混合样品；
B. 样品带回实验室后过 2mm 筛后；3-5g分装至EP管或冻存管中；
C. 迅速置于液氮中冷冻 3~4 小时，然后转移至-80°C 或液氮中长期保存；
运送方式：干冰运输。
样品 第三站
粪便、污泥样本
A. 清晨采集动物的新鲜粪便或污泥样品，放于无菌离心管或其它无菌容器中；
B. 样品带回实验室后分装至5mL或更大体积的离心管或冻存管中；或用PBS进行清洗，离心收集沉淀，分装于2 mL离心管中；
C. 迅速置于液氮中冷冻 3~4 小时，然后转移至-80°C 或液氮中长期保存；
D. 运送方式：干冰运输。
样品 第四站
动物胃肠道样本
A. 无菌条件下对动物个体进行处理，用75%酒精擦拭体表，用无菌解剖剪剪开动物腹部，取出胃肠道等目的器官，用PBS进行清洗，离心收集沉淀，分装于2 mL无菌离心管中；
B. 迅速置于液氮中冷冻 3~4 小时，然后转移至-80°C 或液氮中长期保存；
C. 运送方式：干冰运输。
样品 第五站
水样（海洋、湖泊、鱼塘、自来水）
A. 采用三点取样法取样，取表层水，样品用经过灭菌的洁净纯净水瓶进行采集，采样前用所采水样将其反复冲洗数遍；
B. 对于水质较为清澈（目测）的或微生物含量极其稀少的水样如：自来水、井水、泉水等，用采集回来的水样样品至少1L通过 0.22μm 的微孔滤膜真空过滤，水样中的总微生物被富集滤膜表面，液氮速冻3-5min，-80℃保存；
C. 对于水质较为混浊的（或微生物含量较为丰富的）水样，如：海水，湖泊水，鱼塘里的水，包括污水等。用采集回的水，三点水样混合摇匀后取80mL分装在两个无菌的50mL的离心管，每个分装40mL，防止分装过满，水样冰冻后体积膨胀，导致离心管破裂，被其它微生物群体污染。液氮速冻3-5min，-80℃保存。
D. 运送方式：干冰运输。
样品 第六站
茶叶、叶片表面微生物
A. 10克茶叶，加入50~100mL PBS缓冲液，振荡30到60分钟，150-200r/min，超声5分钟，再振荡30到60分钟，150-200r/min，取上清液加入到50mL离心管，1500 r/min离心1分钟，将上清液转移到另一个50mL离心管，12000 r/min离心10分钟得菌体；
B. 迅速置于液氮中冷冻 3~4 小时，然后转移至-80°C 或液氮中长期保存；
C. 运送方式：干冰运输。
以上是微生物多样性测序最常见样品的取样建议，各位可以根据研究目的和样品实际情况作为参考，若没有涉及的样品大家可以给我们留言。