临床动物试验 (动物细菌感染药敏试验)

上期我们介绍了感染肺部的常见注射方法,本期主要介绍感染神经系统的常用注射方法。文字描述末尾 有附上视频教程链接哦,小伙伴可直接将网址复制到浏览器中观看学习~

脑立体定位注射操作步骤 [1]

1、用70%酒精棉擦拭脑定位仪,将定位仪的保暖托盘加热后放回,注射器吸取病毒液,随后固定在定位仪上;

2 麻醉小鼠,剃除小鼠头部眼睛到耳朵之间的毛发,用棉球棒蘸取碘伏进行消毒,将小鼠放到立体定位仪的保暖托盘上;

3 定位仪归零牙齿和耳朵的标尺,将小鼠上门牙固定到固定板的槽内,确保头部保持固定;

4 调节 bregma (前囟)和 lambda (人字缝尖)在同一矢状线上和水平面,务必确保小鼠鼻子居中、稳定;

5 在小鼠的眼睛上涂上眼药膏,防止眼干;

6 用手术刀划开小鼠头部皮肤,刮掉表面硬脑膜,并用夹子固定脑部皮肤;

注:如有血迹请用棉签擦干,确保bregmalambda位置清晰可见;

7、把bregma坐标归位0X, Y, Z=0),确保lambda位置与bregma位于同一水平面,根据目的脑区设定好坐标,一旦坐标固定,用马克笔在颅骨做出标记;

8 10 s 内在颅骨钻出一个月 0.015 mm 的孔,钻的过程务必小心,以防损伤脑组织;

9 根据设好的坐标进针,进针完成后以 0.05-0.1 μL/ min 的速度缓缓注射病毒液,通常一只小鼠的注射体积在 0.05-2 μL 之间;

10 注射完毕,保持 10min ,然后缓慢回针,操作过程中如有血流出需要用棉签及时吸干;

11 缝合伤口,如有必要可注射止疼药;

12 将小鼠放回笼中, 使 小鼠身体足够温暖,以利于苏醒。

视频教程: https://mp.weixin.qq.com/s/W7EK62Wq4bMilxnUdypy3g

鞘内注射操作步骤 [2]

1 麻醉小鼠,在小鼠的眼睛上涂上眼药膏,防止眼干;

2 靠近小鼠的尾部根部约 2 cm 2 处的皮肤去毛,以便观察下针部位,用蘸取 70% 酒精的纱布进行消毒;

3 将小鼠放到一个特殊的架子上,在小鼠下用一根 15 cm 离心管垫起,从而使下针部位稍微拱起;

4 hamilton 注射器配 30G 针头,吸入病毒液;

5 定位脊椎的 L6 (最突出的一个),并用个手指轻轻按压使之平缓;

6 小心将针头插入 L5 椎骨和 L6 椎骨的凹槽之间并注意小鼠尾部会微微上翘,着标志针头成功插入髓鞘;

7 一旦成功插入,用手指固定针头,缓慢注射 5-10 μL 病毒液;

注:注射体积要适当,太小会加大实验误差,体积太大会增加鞘内压力。

8、将小鼠放回笼中,使小鼠身体足够温暖,以利于苏醒。

视频教程: https://mp.weixin.qq.com/s/BqRiMzMpQXcEtiMPHeFV0g

颞静脉注射操作步骤(适用于新生小鼠) [3]

1、将出生0.5天的新生小鼠放在冰上麻醉30-60s,注意控制时间,不要麻醉过头,容易导致小鼠死亡;

2、将麻醉好的小鼠放置到解剖镜下,一只手控制小鼠,另一只手注射;

3、用食指和大拇指轻抚耳朵位置前后,轻轻拉动小鼠皮肤,当皮肤拉伸的时候颞静脉会看得足够清晰;

注:颞静脉会表现出阴影,而且超背腹运行,并进入颈静脉。

4、如果插入位置适当会看到针尖的斜口处有血液溢出,缓缓将 25-50 μL 病毒液注入,注入病毒液后血管会变白;

5、注射完成后保持针在血管内多留10-15s防止回流,然后拔掉针头,用手轻轻用力按压片刻;

6、将小鼠放回笼中,使小鼠身体足够温暖,以利于苏醒。

视频教程 https://mp.weixin.qq.com/s/XN40iNPaGdlAWxEY3ByzcQ

眼眶后静脉注射 [4]

1、麻醉小 鼠,握住小鼠背部,将拇指放在气管正侧面,头部皮毛拢至手掌,使小鼠眼球凸起。

2、将手腕支撑在稳定的表面上,握住注射器,将食指放在柱塞上方。

3、对小鼠施加轻微压力使眼睛凸出,针头对准内眦,斜面朝外,将针头以 45° 插入眶后窦中心约 5mm

4、使用 0.5ml 28G注射器缓慢注入 150-200 μL (新生小鼠病毒液用量约 50 μL )病毒液;

5、缓慢地取出针头,确保针头不会划伤眼角膜。使用无菌纱布止血,并在眼睛上涂抹药膏助其恢复。

6、将小鼠放回笼中, 使小鼠身体足够温暖,以利于苏醒。

小伙伴可根据实验对象和目的选择合适的注射方式,表 1 列出了不同注射方式对应的作用区域和病毒用量供小伙伴们参考。 AAV2 AAV9 是感染脑部的常用血清型,但由于血脑屏障的存在,使用尾静脉注射感染效果不佳。为此汉恒生物研发出了 可穿过血脑屏障的血清型 AAV-BBB AAV-cap-B10 以及可特异性感染脑部血管内皮细胞的血清型 AAV-brl AAV-BI30 另外汉恒生物还可提供 多种特异性启动子(见表 2 以感染目的细胞。更多关于神经系统感染的问题欢迎咨询汉恒生物!

1 不同注射方式的作用区域和参考剂量

动物感染实验,动物实验对疾病研究的案例

2 神经系统特异性启动子

动物感染实验,动物实验对疾病研究的案例

参考文献:

[1] Benskey M J , Manfredsson F P .Intraparenchymal Stereotaxic Delivery of rAAV and Special Considerations in Vector Handling[J].Springer New York, 2016.

[2]Junko Y,A E L,C M N, et al. A Contemporary Warming/Restraining Device for Efficient Tail Vein Injections in a Murine Fungal Sepsis Model.[J]. Journal of visualized experiments : JoVE,2020(165).

[3]Gombash Lampe, Sara E., Kaspar, Brian K., Foust, Kevin D.. Intravenous injections in neonatal mice. Journal of visualized experiments : JoVE, 2014, (93):e52037.

[4]Gessler, Dominic J., Gessler, Dominic J., Gessler, Dominic J., Tai, Phillip W L., Tai, Phillip W L.. Intravenous Infusion of AAV for Widespread Gene Delivery to the Nervous System. Methods in molecular biology (Clifton, N.J.), 2019, 1950:143-163.