简述rna含量测定的方法及其原理 (rna pull down实验原理与步骤)

一.探针准备

1实验目的: 构建hsa_circRNA_407176全长载体,以hsa_circRNA_407176质粒全长序列为模板PCR扩增获取含有T7 promoter序列的正义链和反义链DNA,后期作为RNA pull down的探针。

2实验材料

l 主要试剂

试剂名称

试剂来源

cat.No

DL2000

YEASEN

10501ES60

琼脂糖

BIOWEST

111860

PrimeSTAR® MaxDNA Polymerase

TAKARA

R045Q

DNA回收试剂盒

天根

DP214-02

l 主要仪器及器材

仪器名称

仪器来源

cat. No

凝胶成像仪

美国KODAK

Gel Logic 1500

高速离心机

enppendorf

5810R

3基因及载体信息

> hsa_circRNA_407176

l GCAGCTTCAAGGTTACTGACTTTTTATGATGTTTGGTGGCTATGAGACTATAGAAGCATACGAAGATGATCTTTATCGAGATGAGTCATCTAGTGAACTGAGTGTTGATAGTGAGGTGGAATTTCAACTCTATAGCCAAATTCATTATGCCCAAGATCTTGATGATGTCATCAGGGAGGAAGAGCATGAAGAAAAGAACTCTGGGAATTCGGAATCTTCGAGTAGTAAACCAAATCAGAAGAAGCTAATCGTCCTTTCAGATAGTGAGGTCATCCAGCTGTCAGATGGGTCAGAGGTCATCACTTTGTCTGATGAAGACAGTATTTATAGATGTAAAGGAAAGAATGTTAGAGTTCAAGCACAAGAAAATGCCCATGGTCTTTCTTCTTCTCTTCAATCTAATGAGCTGGTTGATAAGAAATGCAAGAGTGATATTGAGAAGCCTAAATCTGAAGAGAGATCAGGTGTAATCCGAGAGGTCATGATTATAGAGGTCAGTTCAAGTGAAGAGGAAGAGAGCACCATTTCAGAAGGTGATAATGTGGAAAGCTGGATGCTACTGGGATGTGAAGTAGATGATAAAGATGATGATATCCTTCTCAACCTTGTGGGATGTGAAAACTCTGTTACTGAAGGTTAGTATCATATTGGCCATTTTGAAAGTAGTATCATCTTTCATAAGGAGGACTGCTTTTCCTAGAGAAAAGACCAATAGGGTCTACTCCGTTTAATTCCTCACTTTTTGGTCTTGTTTTTTGGTTTGTTTCTCATGCGACTCTCTTACCAGTGGCTACTCTAATGGTGGTTTGTCTGAACGTCAGAAAGAGTATGTCAGAATACCAAAGACACTCTGCTTCTGCTGTAAGCAGATTCATAGCTGCTTCTTCCTGTTTGGCTAGAGCCAGTTCTGGACCTGAAATCTTACTTCCCCCCTCTCTCTCTGCTTGGTACCA

l 引物序列

表1 PCR的引物序列(红色部分为T7 promoter序列)

引物名称

引物序列

hsa_circRNA_407176-F-Sense

aaaaTAATACGACTCACTATAGGGGCAGCTTCAAGGTTACTGACT

hsa_circRNA_407176-R-Sense

TGGTACCAAGCAGAGAGAG

hsa_circRNA_407176-F-Antisense

GCAGCTTCAAGGTTACTGACT

hsa_circRNA_407176-R-Antisense

aaaaTAATACGACTCACTATAGGGTGGTACCAAGCAGAGAGAG

4实验方法

l PCR扩增目的片段

表2 PCR反应条件

温度(℃)

时间(s)

循环数

98

10

33

55

5

72

10

表3 PCR反应体系

试剂

使用量(μl)

终浓度

PrimeSTAR Max Premix(2X)

25 μl

1X

Primer F

1μl

0.2 μM

Primer R

1μl

0.2 μM

Template

10ng

灭菌水

Up to 50 μl

全长基因片段的获取,纯化、回收(DNA回收试剂盒,天根:DP214-02 ) ,以全长片段为模板用sense-F/sense-R和AntiSense-F/AntiSense-R引物PCR扩增获

取正义链和反义链的目的基因,跑2%琼脂糖凝胶电泳检测,90V,30min。

l 胶回收

1、柱平衡:向吸附柱CB2中(吸附柱放入收集管中)加入500µl平衡液BL,

12,000rpm离心1min,倒掉废液,将吸附柱重新放回收集管中。

2、将单一的目的DNA条带从琼脂糖凝胶中切下,放入干净EP管中,称取重量。

3、向胶块中加入等体积的溶液PC,50℃水浴放置10min左右,使胶块充分 溶解。

4、 将上一步所得溶液加入一个吸附柱CB2中,12,000rpm离心1min,倒掉废液,将吸附柱CB2放入收集管中。

5、向吸附柱中加入600μl漂洗液PW,12,000rpm离心1min,倒掉废液,将吸附柱CB2放入收集管中。

6、重复操作步骤5

7、将吸附柱CB2放入收集管中,12,000rpm离心2min,将吸附柱置于室温,放置3min。

8、将吸附柱CB2放入一个新的离心管中,向吸附膜中间位置滴加30μl洗脱缓冲液EB,室温放置2min,12,000rpm离心1min,收集DNA溶液。

5实验结果

l 正义链和反义链PCR扩增琼脂糖凝胶图

rnapulldown结果解读,rnapulldown实验结果

Marker: DL2000

Sense:正义链产物

Antisense:反义链产物

二.RNA-RNA pull down实验

1实验目的 :通过RNA-RNA pull down实验,在细胞中获取与目的RNA有相互作用的RNA;并进行qPCR检测。

2实验材料

l 主要试剂

试剂名称

试剂来源

cat.No

蛋白Marker

Thermo Scientific

26616

SDS

Scientific Phygene

PH0361

银染试剂盒

碧云天

P0017S

T7 RNA聚合酶

罗氏

10881767001

Dynabeads™ MyOne™ Streptavidin C1

invitrogen

65001

Biotin RNA labeling Mix

罗氏

10881767001

l 主要仪器及器材

仪器名称

仪器来源

cat. No

高速离心机

enppendorf

5810R

水平电泳槽

天能

HE-120

3实验方法

l 体外转录&生物素标记RNA

1、取一支无RNA酶的EP管,加入表2-2的转录体系,37℃孵育35min。

表2-2 转录体系

线性化DN*片A**段

1ug

Biotin RNA Labeling mix

2µl

10×Transcription buffer

2µl

RNA Polymerase

2µl

补足RNase-free水至20µl

2、取出孵育好的EP管,加入2µl的DNaseⅠ,37℃孵育15min,除去DNA。

3、取出上述操作的EP管,加入2µl 0.2M EDTA(pH=8.0)终止反应。

4、取3µg Biotin标记的RNA,加入适量Structure Buffer(10mM Tris pH=7.0,0.1M KCl,10mM MgCl2),使得RNA形成二级结构。然后将RNA 95℃加热2min,冰浴3min,室温静置30min。

l 链霉素亲和磁珠与生物素标记的RNA结合

1、磁珠准备:使用Wash Buffer I 500µl冲洗磁珠3次。

2、用Wash Buffer I(配方如表2-3所示)重悬磁珠,然后将其加入到生物素标记并变性的RNA中,4℃过夜。

3、过夜的混合物3000rpm离心1min,去上清。

4 、Wash Buffer I冲洗3次。

表2-3 Wash Buffer 配方

rnapulldown结果解读,rnapulldown实验结果

l 磁珠复合物与RNA结合

1、往磁珠-RNA混合物中加入细胞裂解液,裂解液中加入适量RNase*制剂抑**,室温旋转混匀1h。

2、将孵育好的磁珠-RNA置于磁力架上去除上清,使用Wash BufferII冲洗3次,每次1ml。

l RNA提取

1. Input样品及sense、antisense、beads 样本分别加入1ml TRIZOL, 颠倒混匀 15 s;

3. 13000 g、4℃离心 10 min,收集上层水相,转移到新无 RNA 酶离心管中;

4. 分别加入 5 µL 糖原(1ug/ul),500 µL 异丙醇充分颠倒混匀;

5. -80℃过夜沉淀 RNA 样品;

6. 13000 g、4℃离心 10 min,弃上清;

7. 分别加入 1 mL 预冷的 75%乙醇,10000 g、4℃离心 5min,弃上清,室温静置风干 10min;

8. 加入15ul DEPC处理水,溶解RNA。

l RNA反转录

1. 按照下列组分配制RT反应液(反应液制备请在冰上进行)。为了保证反应液配制的准确性,减少分装造成的误差,应按照比实际用量稍大的体积配制反应液,最后加入RNA样品。

试剂组分

使用量

终浓度

5×PrimeScript Buffer(for Real Time)

2uL

PrimeScript RT Enzyme Mix I

0.5uL

Random 6 mers(100 μM)*1

0.5uL

50 pmol

RNA

7 uL

2. 按如下程序进行反转录:

37℃,15min;85℃,5sec;-20℃保存备用!

3. 定量PCR检测

1) 将Mix在4℃下融解,轻柔地上下颠倒混匀并进行短暂离心。

2) 冰上配制下表中的反应液

成分

加入量

终浓度

Hieff qPCR SYBR® Green Master Mix (low Rox)

5μL

Forward Primer (10μM)

0.2μL

0.2 μM

Reverse Primer (10μM)

0.2μL

0.2 μM

cDNA(diluted 1:5)

2μL

RNase-free Water

to 10μL

3)将反应管进行短暂离心,确保所有反应液在反应孔底部。

4)采用三步法程序进行反应:

循环数

步骤

温度

时间

荧光采集

1

预变性

95℃

5min

No

40

变性

95℃

10s

No

退火

60℃

30s

Yes

上述反应结束后,从60℃~95℃过程中进行熔解曲线分析

l 实验结果

qPCR检测结果(详细数据见附件excel” RNA RNA pull down 检测结果”)

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项目内容

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